Team:Paris Saclay/Notebook/July/9

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(Difference between revisions)
(1 - PCR purification of BphR1, BphR2 and BphA1)
(2 - Digestion PCR products : BphR2, BphR1, BphA1 and digestion of pSB1C3)
 
Line 46: Line 46:
** H2O : 10.5µL
** H2O : 10.5µL
-
* PSB1C3 :  
+
* pSB1C3 :  
** pSB1C3 : 4µL
** pSB1C3 : 4µL
** Buffer orange : 0.8µL
** Buffer orange : 0.8µL

Latest revision as of 23:56, 4 October 2013

Contents

Notebook : July 9

Lab work

Objective : obtaining biobricks in pSB3K3

1 - Transformation of BBa_J04450 in DH5α

Anaïs

Protocol : Bacterial transformation


B - PCB sensor system

Objective : obtaining BBa_K1155001, BBa_K1155002 and BphR2 protein

1 - PCR purification of BphR1, BphR2 and BphA1

Zhou

We did a PCR amplification for BphR1, BphR2 and BphA1 genes from strain Pseudomonas pseudoalcaligenes. Products were good and purified following the protocol.

Protocol : [http://www.mn-net.com/tabid/1452/default.aspx Gel purification ]

2 - Digestion PCR products : BphR2, BphR1, BphA1 and digestion of pSB1C3

Abdou, Anaïs

Used quantities :

  • BphA1 :
    • DNA : 8µL
    • Buffer FD : 1.6µL
    • EcoRI FD : 1µL
    • PstI FD : 1µL
    • H2O : 4.4µL
  • BphR1, BphR2 :
    • DNA : 15µL
    • Buffer FD : 3µL
    • EcoRI FD : 0.75µL
    • PstI FD : 0.75µL
    • H2O : 10.5µL
  • pSB1C3 :
    • pSB1C3 : 4µL
    • Buffer orange : 0.8µL
    • EcoRI : 0.5µL
    • PstI : 0.5µL
    • H2O : 2.2µL

We let our digestion 1h30 at 37°C.

3 - Inactivation of EcoRI/PstI used for the digestion of PCR products : BphR1, BphR2, BphA1 and pSB1C3

Anaïs, Sheng

Protocol : Ethanol precipitation

Nanodrop :

  • BphA1 : 108.3ng/µL
  • BphR1 : 97.9ng/µL
  • BphR2 : 24.2ng/µL
  • pSB1C3 : 36.1ng/µL

4 - Ligation of BphA1, BphR1, BphR2 and pSB1C3

Zhou

Used quantities :

  • pSB1C3 : 2µL
  • DNA : 2µL
  • Buffer ligase : 2µL
  • Ligase : 1µL
  • H2O : 13µL


Human Practices

We made the thrid meeting about open source : Open Source Reflexion


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